Composizione
- Sodio acetato anidro (NaC2H3O2) 9 g
- Acido acetico glaciale 20 ml
- Formalina commerciale (37%-40%) 40 ml
- Acqua distillata 925 ml
In alternativa a 9g di Sodio acetato anidro,si possono usare 15 g Sodio acetato idrato (CH3CO2Na ∙ 3H2O)
Procedimento
- Sciogliere il sale in acqua distillata
- aggiungere la formalina e l'acido acetico glaciale, mescolare bene.
- Aggiustare il pH a 4,15 se necessario.
Questa soluzione è stabile in bottiglia di vetro tappata per almeno 1 anno
Dovendo scegliere uno solo fissativo fra quelli esistenti in commercio, è consigliabile orientarsi sul SAF per i seguenti motivi:
· non contiene composti a base di mercurio, è quindi più sicuro, meno corrosivo e meno inquinante per l'ambiente;
·
consente una buona conservazione della morfologia di cisti, uova e larve di elminti,
oocisti di coccidi e spore di microsporidi - ma soprattutto un'ottima differenziazione della morfologia del nucleo dei
trofozoiti di protozoi;
·
permette le procedure di concentrazione con formalina-etere/etile acetato e di flottazione
con zinco solfato; ·
consente la ricerca di coproantigeni di parassiti e le colorazioni con fluorocromi; ·
consente l'esecuzione delle colorazioni permanenti con ferro-ematossilina (ottimi risultati)
e con la colorazione tricromica di Gomori modificata da Wheatley; ·
consente la colorazione tricromica modificata per microsporidi; ·
è poco costoso e può essere preparato "in casa" senza difficoltà.
Svantaggi: -
la qualità della colorazione tricromica è più scadente rispetto a quella ottenuta da
campioni fissati in soluzione di Schaudinn o PVA; -
a causa della bassa concentrazione di formalina, è obbligatorio rispettare come minimo il rapporto
di 1 parte di feci e 3 parti di fissativo, pena la fermentazione del campione fecale.